Роль эндогенного сероводорода в регуляции процессов жизнедеятельности

Рассмотрены вопросы биологической роли и медицинского значения эндогенного H₂S, ранее считавшегося исключительно токсическим для человека веществом – экологическим токсикантом. Затронуты аспекты его метаболизма в организме и регуляции образования с помощью доноров H₂S и веществ, влияющих на процессы биосинтеза этого газотрансмиттера. Рассмотрены точки приложения и механизмы влияния H₂S на процессы жизнедеятельности в норме и в условиях патологии. Широта участия H₂S в регуляции метаболических реакций, физиологических и патологических процессов в организме позволяет рассматривать этот газотрансмиттер как универсальный биорегулирующий фактор. Многочисленными исследованиями показано, что, как недостаток, так и избыток H₂S в организме может быть связан с возникновением и течением различных нарушений жизнедеятельности, имеющих как функциональную, так и органическую природу, вызванных химическими, физическими, биологическими или чисто информационными факторами. В связи с этим, в настоящее время активно разрабатываются различные технологии, направленные на предупреждение и коррекцию различных нарушений жизнедеятельности с использованием веществ, регулирующих уровень эндогенного сероводорода в организме, направленных на усиление или подавление его образования.

1. Колесников, С. И. Сероводород как третья эссенциальная газовая молекула живых тканей / С. И. Колесников, Б. Я. Власов, Л. И. Колесникова // Вестник РАМН. – 2015. – Т. 70, № 2. – С. 237–241. – doi: 10.15690/vramn.v70i2.1318.

2. Зинчук, В. В. Кислородтранспортная функция крови и газотрансмиттер сероводород / В. В. Зинчук // Успехи физиол. наук. – 2021. – Т. 52, № 3. – С. 41–55. – doi: 10.31857/s0301179821030085.

3. In vivo monitoring of endogenous hydrogen sulfide and evaluation of natural protectants in liver injury mice using a highly selective bioluminescent probe / C. Hu, Z. Yang, X. Shi [et al.] // Biosens. Bioelectron. – 2025. – Vol. 278. – Р. 117343. – doi: 10.1016/j.bios.2025.117343.

4. Яковлев, А. В. Физиологическая роль сероводорода в нервной системе / А. В. Яковлев, Г. Ф. Ситдикова // Гены и клетки. – 2014. – Т. 9, № 3. – С. 1–7.

5. Murros, K. E. Hydrogen sulfide produced by gut bacteria may induce Parkinson’s disease / K. E. Murros // Cells. – 2022. – Vol. 11, № 6. – P. 978. – doi: 10.3390/cells11060978.

6. Ju, Z. A highly selective fluorescent probe for hydrogen sulfide and its application in living cell / Z. Ju, Y. Zhang, L. Kong // J. Fluoresc. – 2025. – Vol. 35, № 2. – P. 1163–1169. – doi: 10.1007/s10895-024-03601-3.

7. Unveiling the anti-inflammatory mechanism of exogenous hydrogen sulfide in Kawasaki disease based on network pharma cology and experimental validation / L. Yu, Q. Luo, X. Rao [et al.] // Sci. Rep. – 2025. – Vol. 15, № 1. – Р. 7410. – doi: 10.1038/s41598-025-91998-7.

8. Roles of hydrogen sulfide (H2S) as a potential therapeutic agent in cardiovascular diseases: A narrative review / K. N. Islam, I. D. Nguyen, R. Islam [et al.] // Cureus. – 2024. – Vol. 16, № 7. – Р. e64913. – doi: 10.7759/cureus.64913.

9. The therapeutic potential of hydrogen sulfide and its donors, a new discovery in vascular diseases / Y. Pu, W. Lin, S. Ren [et al.] // J. Cardiovasc. Pharmacol. – 2025. Epub ahead of print. – doi: 10.1097/FJC.0000000000001714.

10. Signaling paradigms of H2S-induced vasodilation: a comprehensive review / C. Munteanu, C. Popescu, A. Vlădulescu-Trandafir, G. Onose // Antioxidants (Basel). – 2024. – Vol. 13, № 10. – Р. 1158. – doi: 10.3390/antiox13101158.

11. Endogenous hydrogen sulfide persulfidates endothelin type A receptor to inhibit pulmonary arterial smooth muscle cell proliferation / Y. Zhang, X. Tian, L. Chen [et al.] // Redox. biol. – 2025. – Vol. 80. – Р. 103493. – doi: 10.1016/j.redox.2025.103493.

12. Hydrogen sulfide as a new therapeutic target of pulmonary hypertension: an overview with update on immunomodulation / X. X. Zhu, C. Y. Zhao, Q. B. Lu [et al.] // Front. Pharmacol. – 2025. – Vol. 16. – Р. 1510275. – doi: 10.3389/fphar.2025.1510275.

13. Pharmacology of hydrogen sulfide and its donors in cardiometabolic diseases / H. J. Sun, Q. B. Lu, X. X. Zhu [et al.] // Pharmacol. rev. – 2024. – Vol. 76, № 5. – P. 846–895. – doi: 10.1124/pharmrev.123.000928.

14. Cystathionine γ-lyase attenuates vascular smooth muscle cell senescence via Foxm1-Gas1 pathway to mediate arterial stiffness / Q. Lin, C. Cui, Y. Zhao [et al.] // Antioxid. Redox Signal. – 2025. – Vol. 42, № 13-15. – P. 655–671. – doi: 10.1089/ars.2024.0602.

15. Содержание газотрансмиттеров в пуповинной крови и крови новорожденных, родившихся у матерей с преэклампсией / И. Г. Попова, О. Г. Ситникова, С. Б. Назаров [и др.] // Рос. вестн. перинатол. и педиатрии. – 2021. – Т. 66, № 4. – С. 53–57. – doi: org/10.21508/1027-4065-2021-66-4-53-57.

16. Hydrogen sulfide: An endogenous regulator of the immune system / N. Dilek, A. Papapetropoulos, T. Toliver-Kinsky, C. Szabo // Pharmacol. Res. – 2020. – Vol. 161. – Epub 2020, Aug 8. – doi: 10.1016/j.phrs.2020.105119.

17. Hydrogen sulfide promotes platelet autophagy via PDGFR-α/PI3K/Akt signaling in cirrhotic thrombocytopenia / H. X. Yang, Y. J. Li, Y. L. He [et al.] // J. clin. transl. hepatol. – 2024. – Vol. 12, № 7. – P. 625–633. – doi: 10.14218/JCTH.2024.00101.

18. Xu, S. Targeting hydrogen sulfide as a promising therapeutic strategy for atherosclerosis / S. Xu, Z. Liu, P. Liu // Int. J. Cardiol. – 2014. – Vol. 172, № 2. – P. 313–317. – doi: 10.1016/j.ijcard.2014.01.068.

19. Hydrogen sulfide mitigates ox-LDL-induced NLRP3/caspase-1/GSDMD dependent macrophage pyroptosis by S-sulfhydrating caspase-1 / Z. Jia, X. Zhang, Z. Li [et al.] // Mol. med. rep. – 2024. – Vol. 30, № 2. – P. 135. – doi: 10.3892/mmr.2024.13259.

20. LIFU-unlocked endogenous H2S generation for enhancing atherosclerosis-specific gas-enzymatic therapy / H. An, X. Qiu, X. Wang [et al.] // Biomaterials. – 2025. – Vol. 315. – Р. 122972. – doi: 10.1016/j.biomaterials.2024.122972.

21. H2S donor SPRC ameliorates cardiac aging by suppression of JMJD3, a histone demethylase / S. Li, Q. Li, H. Xiang [et al.] // Antioxid. Redox Signal. – 2025. – Vol. 42, № 7-9. – P. 301–320. – doi: 10.1089/ars.2024.0605.

22. Szabo, C. Hydrogen sulfide, an endogenous stimulator of mitochondrial function in cancer cells / C. Szabo // Cells. – 2021. – Vol. 10, № 2. – P. 220. – doi: 10.3390/cells10020220.

23. Hydrogen sulfide attenuates sepsis-induced cardiac dysfunction in infant rats by inhibiting the expression of coldinducible RNA-binding protein / D. Li, S. Jin, X. Teng [et al.] // Biosci. Rep. – 2025. – Vol. 45, № 2. – Р. BSR20241398. – doi: 10.1042/BSR20241398.

24. Hydrogen sulfide (H2S) mitigates sepsis-induced adrenal dysfunction via inhibition of TNFα-mediated necroptosis / K. Ma, J. Huang, J. Zhang [et al.] // Pathogens. – 2025. – Vol. 14, № 5. – P. 439. – doi: 10.3390/pathogens14050439.

25. Lu, W. Anti-inflammatory effects of hydrogen sulfide in axes between gut and other organs / W. Lu, J. Wen // Antioxid. Redox Signal. – 2025. – Vol. 42, № 7-9. – P. 341–360. – doi: 10.1089/ars.2023.0531.

26. Paul, B. D. Neuroprotective signaling by hydrogen sulfide and its dysregulation in Alzheimer's disease / B. D. Paul, A. A. Pieper // Curr. opin. chem. biol. – 2024. – Vol. 82. – Р. 102511. – doi: 10.1016/j.cbpa.2024.102511.

27. Inhibited endogenous H2S generation and excessive autophagy in hippocampus contribute to sleep deprivation-induced cognitive impairment / S. Q. Yang, L. Jiang, F. Lan [et al.] // Front. Psychol. – 2019. – Vol. 10. – Р. 53. – doi: 10.3389/fpsyg.2019.00053.

28. Critical role of hydrogen sulfide in the management of neurodegenerative disease / R. Pawar, D. Pandey, S. Naqvi, A. Sharma // Nitric Oxide. – 2025. – Vol. 154. – P. 77–85. – doi: 10.1016/j.niox.2024.11.006.

29. Neuroprotective mechanism of hydrogen sulfide in okadaic acid-induced alzheimer-like pathology / P. K. Kamat, A. Kalani, N. Debnath [et al.] // Geroscience. – 2025. – Epub ahead of print. – doi: 10.1007/s11357-025-01662-1.

30. Hydrogen sulfide and its donors for the treatment of traumatic brain injury: A comprehensive review / X. Li, Y. An, M. Xu [et al.] // Int. J. Pharm. – 2025. – Vol. 680. – Р. 125792. – Epub ahead of print. – doi: 10.1016/j.ijpharm.2025.125792.

31. Elucidating the significance of endogenous hydrogen sulfide as a novel candidate for postoperative pain recovery in a murine model / J. L. Dallazen, L. G. Santos, S. A. Teixeira [et al.] // Eur. J. Pain. – 2025. – Vol. 29, № 6. – Р. e70043. – doi: 10.1002/ejp.70043.

32. Hydrogen sulfide donors alleviate itch secondary to the activation of type-2 protease activated receptors (PAR-2) in mice / S. A. Coavoy-Sánchez, L. Rodrigues, S. A. Teixeira [et al.] // Pharmacol. Res. – 2016. – Vol. 113, Pt A. – P. 686–694. – doi: 10.1016/j.phrs.2016.09.030.

33. S-allyl-cysteine ameliorates cirrhotic portal hypertension by enhancing lymphangiogenesis via a VEGF-C-independent manner / G. Luo, Z. Wu, Q. Fan [et al.] // Liver Int. – 2025. – Vol. 45, № 3. – Р. e70024. – doi: 10.1111/liv.70024.

34. Abdel-Hamid, H. A. Hydrogen sulfide protects the endometrium in a rat model of type 1 diabetes via modulation of PPARγ/mTOR and Nrf-2/NF-κb pathways / H. A. Abdel-Hamid, H. Marey, M. F. G. Ibrahim // Arch. Physiol. Biochem. – 2024. – Vol. 130, № 6. – P. 909–920. – doi: 10.1080/13813455.2024.2347239.

35. Polyphenol-mediated redox-active hydrogel with H2S gaseous-bioelectric coupling for periodontal bone healing in diabetes / X. Fang, J. Wang, C. Ye [et al.] // Nat. commun. – 2024. – Vol. 15, № 1. – P. 9071. – doi: 10.1038/s41467-024-53290-6.

36. An injectable and adaptable system for the sustained release of hydrogen sulfide for targeted diabetic wound therapy by improving the microenvironment of inflammation regulation and angiogenesis / H. Zhang, X. Dong, Y. Liu [et al.] // Acta Biomater. – 2025. – Vol. 196. – P. 364–379. – doi: 10.1016/j.actbio.2025.02.048.

37. Shensu IV maintains the integrity of the glomerular filtration barrier and exerts renal protective effects by regulating endogenous hydrogen sulfide levels / S. Zhou, L. Zheng, T. Zheng [et al.] // Front. Pharmacol. – 2024. – Vol. 15. – Р. 1447249. – doi: 10.3389/fphar.2024.1447249.

38. Isorhamnetin alleviates renal fibrosis by inducing endogenous hydrogen sulfide and regulating thiol-based redox state in obstructed kidneys / Z. Zhang, H. Zhang, J. Shi [et al.] // Biomolecules. – 2024. – Vol. 14, № 10. – P. 1233. – doi: 10.3390/biom14101233.

39. The functions of hydrogen sulfide on the urogenital system of both males and females: from inception to the present / S. Salehiyeh, A. F. Faiz, M. Manzourolhojeh [et al.] // Naunyn schmiedebergs arch. pharmacol. – 2024. – Vol. 397, № 9. – P. 6391–6415. – doi: 10.1007/s00210-024-03086-8.

40. Hydrogen sulfide and ferroptosis inhibition underlies the dietary restriction-induced protection against cyclophosphamide cystitis / Z. Mao, P. Chen, Q. Ji [et al.] // Front. Pharmacol. – 2025. – Vol. 16. – Р. 1562852. – doi: 10.3389/fphar.2025.1562852.

41. Hydrogen sulfide and its potential as a possible therapeutic agent in male reproduction / Z. Pilsova, A. Pilsova, N. Zelenkova [et al.] // Front. endocrinol. (Lausanne). – 2024. – Vol. 15. – Р. 1427069. – doi: 10.3389/fendo.2024.1427069.

42. Hydrogen sulfide protects against toxicant acroleininduced ferroptotic cell death in Sertoli cells / Z. Mao, Q. Ji, P. Chen [et al.] // Front. Pharmacol. – 2024. – Vol. 15. – Р. 1440147. – doi: 10.3389/fphar.2024.1440147.

43. Mitochondrial sulfide promotes life span and health span through distinct mechanisms in developing versus adult treated Caenorhabditis elegans / A. R. Vintila, L. Slade, M. Cooke [et al.] // PNAS. – 2023. – Vol. 120, № 32. – Р. e2216141120. – doi: 10.1073/pnas.2216141120.

44. H2S: a universal defense against antibiotics in bacteria / K. Shatalin, E. Shatalina, A. Mironov, E. Nudler // Science. – 2011. – Vol. 334, № 6058. – P. 986–990. – doi: 10.1126/science.1209855.

45. Hydrogen sulfide (H2S) coordinates redox balance, carbon metabolism, and mitochondrial bioenergetics to suppress SARS-CoV-2 infection / R. Agrawal, V. K. Pal, S. S. K [et al.] // PLoS Pathog. – 2025. – Vol. 21, № 5. – Р. e1013164. – doi: 10.1371/journal.ppat.1013164.

46. Engineered probiotics enable targeted gut delivery of dual gasotransmitters for inflammatory bowel disease therapy / T. Ma, G. Gan, J. Cheng [et al.] // Angew. Chem. Int. Ed Engl. – 2025. – Vol. 64, № 22. – Р. e202502588. – doi: 10.1002/anie.202502588.

47. Emerging roles of hydrogen sulfide in colorectal cancer / Z. L. Jiang, Y. Liu, C. H. Zhang [et al.] // Chem. biol. interact. – 2024. – Vol. 403. – Р. 111226. – doi: 10.1016/j.cbi.2024.111226.

48. Role of hydrogen sulfide-microRNA crosstalk in health and disease / M. R. Jing, X. Y. Liang, Y. X. Zhang [et al.] // Nitric oxide. – 2024. – Vol. 152. – P. 19–30. – doi: 10.1016/j.niox.2024.09.002.

49. H2S-Prdx4 axis mitigates Golgi stress to bolster tumorreactive T cell immunotherapeutic response / N. Oberholtzer, P. Chakraborty, M. F. Kassir [et al.] // Sci. Adv. – 2024. – Vol. 10, № 46. – Р. eadp1152. – doi: 10.1126/sciadv.adp1152.

50. Exploring the impact of hydrogen sulfide on hematologic malignancies: a review / S. Lou, Z. L. Jiang, Y. W. Zhu [et al.] // Cell. Signal. – 2024. – Vol. 120. – Р. 111236. – doi: 10.1016/j.cellsig.2024.111236.