Чувствительность возбудителей дерматофитий к противогрибковым средствам, антисептикам и дезинфектантам

Дерматофиты – группа патогенных для человека грибов – представлены 43 видами, наиболее значимыми из которых в патологии человека являются представители родов Trichophyton, Microsporum, Epidermophyton. В последние годы наблюдается более частое выявление смешанных микозов у пациентов с установленными диагнозами «микоз стоп», «микоз кожи ладоней», «онихомикоз», при этом нередко в качестве этиологического фактора при микст-инфекциях выступают ассоциации дерматофитов и другие виды плесневых грибов, а также дерматофитов и дрожжеподобных грибов.

Целью проведения исследования было установление чувствительности возбудителей дерматофитий (Trichophyton spp., Microsporum spp.), выделенных из образцов биологического материала пациентов с микозами, к современным противогрибковым средствам, антисептикам и дезинфектантам.

В рамках данного исследования от пациентов с диагнозами «В35.3 Микоз стоп», «В35.0 Микроспория» получено 142 клинических изолята дерматофитов, идентифицированных как Trichophyton spp. (n = 68) и Microsporum spp. (n = 74). Установлено, что наиболее активными противогрибковыми средствами в отношении клинических изолятов дерматофитов являются итраконазол, тербинафин и амфотерицин В. Среди изученных клинических изолятов Trichophyton spp. в Microsporum spp. выявлены условно устойчивые к исследованным антимикотикам штаммы. Большинство изученных клинических изолятов дерматофитов были высоко чувствительны к антисептикам на основе йода, фукорцина, ундециленовой и борной кислот. Наибольшую активность в отношении клинических изолятов дерматофитов проявили дезинфектанты на основе альдегидов, производных гуанидина, триаминов, гликолевой кислоты. Антисептики и дезинфектанты при дерматомикозах целесообразно применять с учетом чувствительности к ним микромицет.

1. Лобанова, Е. Г., Чекалина Н. Д. Противогрибковые средства. – 2021. – Режим доступа: https:/ www.rlsnet.ru/library/articles/dermatologiya/protivogribkovye-sredstva-40.

2. Руппель, В. В. Дерматофития. Как диагностировать и лечить в условиях ветеринарной клиники [Электронный ресурс] / В. В. Руппель / Дерматология. – 2018. – № 2. – Режим доступа: https:/spbvet.info/zhurnaly/2-2018/dermatofitiya-kak-diagnostirovat-i-lechit-v-usloviyakh-veterinarnoy-kliniki. – Дата доступа: 22.03.2022.

3. Устойчивость к противогрибковым препаратам. – 2020. – Режим доступа: https://www.who.int/ru/news-room/fact-sheets/detail/antimicrobial-resistance.

4. Герасимчук, Е. В. Микооптикфейс – современный диагностический алгоритм // Медицина и высокие технологии. – 2017. – № 1. – С. 22–24.

5. Haghani, I., Shams-Ghahfarokhi M., Dalimi Asl A. et al. Molecular identification and antifungal susceptibility of clinical fungal isolates from onychomycosis (uncommon and emerging species) // Mycoses. – 2019. – № 62(2). – Р. 128–143. – doi: 10.1111/myc.12854

6. Gupta, A. K., Mays R. R., Versteeg S. G. et al. Update on current approaches to diagnosis and treatment of onychomycosis / Expert Rev Anti Infect Ther. – 2018. – № 16(12). – Р. 929–938. – doi: 10.1080/14787210.2018.1544891

7. Joyce, A., Gupta A. K., Koenig L. et al. Fungal Diversity and Onychomycosis: An analysis of 8,816 toenail samples using quantitative PCR and next-generation sequencing // J Am Podiatr Med Assoc. – 2019. – № 109(1). – Р. 57–63. doi: 10.7547/17-070

8. Khurana, A., Masih A., Chowdhary A., Sardana K. Correlation of In Vitro Susceptibility Based on MICs and Squalene Epoxidase Mutations with Clinical Response to Terbinafine in Patients with Tinea Corporis/Cruris // Antimicrob Agents Chemother. – 2018. – Vol. 62. – Р. 1–9.

9. Saunte, D. M. L., Hare R. K., Jørgensen K. M. Emerging terbinafine resistance in Trichophyton: clinical characteristics, squalene epoxidase gene mutations and a reliable EUCAST method for detection // Antimicrob Agents Chemother. – 2019. – Vol. 63. – Р. 1–9.

10. Hsieh, A., Quenan S., Riat A., Toutous-Trellu L. A new mutation in the SQLE gene of Trichophyton mentagrophytes associated to terbinafine resistance in a couple with disseminated tinea corporis // J Mycol Med. – 2019. – № 29. – Р. 352–355. https:/doi.org/10.1016/j.mycmed.2019.100903

11. Monod, M. Antifungal resistance in dermatophytes: emerging problem and challenge for the medical community / J Mycol Med. – 2019. – № 29. – Р. 283–284.

12. Singh, A., Masih A., Khurana A., Singh P. K. High terbinafine resistance in Trichophyton interdigitale isolates in Delhi, India harbouring mutations in the squalene epoxidase gene // Mycoses. – 2018. – № 61. – Р. 477–484.

13. Taghipour, S., Shamsizadeh F., Pchelin I. M. Emergence of terbinafine resistant Trichophyton mentagrophytes in Iran, harboring mutations in the squalene epoxidase (Sqle) gene / Infect Drug Resist. – 2020. – № 13. – Р. 845–850.

14. Danielsen, A. G., Thomsen J. S., Svejgaard E. L. Severe skin rash in patients treated with terbinafine // Ugeskr Laeger. – 2006. – Vol. 168. – P. 3825–3826.

15. Методы оценки устойчивости грибов к антисептикам и дезинфектантам: инструкция по применению: утв. М-вом здравоохранения 28.12.2018, рег. № 230-1218 [Электронный ресурс] / разраб. БГМУ; авт.-сост.: Ж. Ф. Циркунова [и др.]. – Минск, 2018. – 6 с. – Режим доступа: https:/www.bsmu.by/downloads/vrachu/instrukcii/2019/4.pdf. – Дата доступа: 22.03.2022.

16. How to: perform antifungal susceptibility testing of microconidia-forming dermatophytes following the new reference EUCAST method E. Def 11.0, exemplified by Trichophyton / M. C. Arendrup [et al.] // Clin. Microbiol. Infect. – 2021. – Vol. 27, № 1. – P. 55–60.